Использование искусственных твердотельных пор для измерения каталитической активности отдельных молекул пероксидазы хрена
https://doi.org/10.18384/2949-5067-2025-1-40-51
Аннотация
Цель. Определение каталитической активности единичной молекулы пероксидазы хрена (ПХ) в реакции окисления субстрата 2,2'-азино-бис-[3-этилбензтиазолин-6-сульфоната] (АБТС) пероксидом водорода.
Процедура и методы. Для определения (мониторинга) каталитической активности ПХ использовали поровую технологию, что позволило провести анализ активности единичной молекулы ПХ без введения в систему дополнительных компонентов для усиления сигнала. Для этого использовали твёрдотельную пору размером около 5 нм, сформированную методом электронно-лучевого сверления в пластине нитрида кремния толщиной ~40 нм. Молекула ПХ была встроена в эту пору, после чего проводили анализ каталитической активности встроенной в пору молекулы, в присутствии АБТС и H2O2 путём измерения ионного тока, протекающего через пору со встроенной в неё молекулой ПХ.
Результаты. Мониторинг каталитической активности ПХ в реакции окисления АБТС был проведён путём регистрации ионного тока, протекающего через пору.
Теоретическая и/или практическая значимость. Было показано, что изготовленная пора может быть использована для мониторинга каталитической активности ПХ. Полученные результаты важны для развития работ в области исследования ферментов на уровне единичных молекул.
Об авторах
Ю. Д. ИвановРоссия
Иванов Юрий Дмитриевич – доктор биологических наук, профессор, заведующий лабораторией нанобиотехнологии; ведущий научный сотрудник лаборатории № 6.2. – ударно-волновых воздействий
г. Москва
А. Н. Аблеев
Россия
Аблеев Александр Нариманович – ведущий инженер лаборатории нанобиотехнологии
г. Москва
В. В. Шумянцева
Россия
Шумянцева Виктория Васильевна – доктор биологических наук, профессор, заведующий лабораторией биоэлектрохимии
г. Москва
И. Д. Шумов
Россия
Шумов Иван Дмитриевич – кандидат биологических наук, научный сотрудник лаборатории нанобиотехнологии
г. Москва
В. С. Зиборов
Россия
Зиборов Вадим Серафимович – кандидат физико-математических наук, старший научный сотрудник лаборатории № 6.2. – ударно-волновых воздействий; ведущий специалист лаборатории нанобиотехнологии
г. Москва
Е. Д. Неведрова
Россия
Неведрова Екатерина Дмитриевна – младший научный сотрудник лаборатории нанобиотехнологии
г. Москва
А. В. Виноградова
Россия
Виноградова Ангелина Владимировна – младший научный сотрудник лаборатории нанобиотехнологии
г. Москва
И. А. Иванова
Россия
Иванова Ирина Александровна – младший научный сотрудник лаборатории исследований единичных биомакромолекул
г. Москва
Н. В. Ваулин
Россия
Ваулин Никита Васильевич – лаборант лаборатории возобновляемых источников энергии
г. Санкт-Петербург
Д. В. Лебедев
Россия
Лебедев Денис Владимирович – кандидат физико-математических наук, старший научный сотрудник лаборатории возобновляемых источников энергии
г. Санкт-Петербург
А. С. Букатин
Россия
Букатин Антон Сергеевич – кандидат физико-математических наук, доцент, старший научный сотрудник лаборатории возобновляемых источников энергии
г. Санкт-Петербург
И. С. Мухин
Россия
Мухин Иван Сергеевич – доктор физико-математических наук, профессор, заведующий лабораторией возобновляемых источников энергии
г. Санкт-Петербург
И. Н. Сараева
Россия
Сараева Ирина Николаевна – кандидат физико-математических наук, научный сотрудник лаборатории лазерной нанофизики и биомедицины отделения квантовой радиофизики им. Н. Г. Басова
г. Москва
П. Ю. Апель
Россия
Апель Павел Юрьевич – доктор химических наук, начальник Центра прикладной физики Лаборатории ядерных реакций им. Г. Н. Флерова
г. Дубна, Московская обл.
Е. С. Юшков
Россия
Юшков Евгений Семенович – кандидат технических наук, доцент кафедры № 71 «Экономика и менеджмент в промышленности»
г. Москва
А. И. Арчаков
Россия
Арчаков Александр Иванович – доктор биологических наук, профессор, научный руководитель
г. Москва
Список литературы
1. АСМ-визуализация, измерение активности и физико-химических свойств единичных мономеров и олигомеров ферментов / Ю. Д. Иванов, Н. C. Буxаpина, Т. О. Плешакова, П. А. Фpанцузов, Н. В. Кpоxин, В. C. Зибоpов, А. И. Аpчаков // Биофизика. 2011. Т. 56. № 5. С. 939–944.
2. АСН-нанотехнология для визуализации, счёта, определения упругости и активности единичных белков цитохром Р 450-содержащих монооксигеназных систем / Ю. Д. Иванов, Н. С. Бухарина, П. А. Французов, Т. О. Плешакова, А. В. Мунро, Г. Хуэй Бон Хоа, А. И. Арчаков // Нанотехнологии и охрана здоровья. 2010. Т. 2. № 1. С. 30–35.
3. Direct Observation of enzyme activity with the atomic force microscope / M. Radmacher, M. Fritz, H. G. Hansma, P. K. Hansma // Science. 1994. Vol. 265. Iss. 5178. P. 1577–1579. DOI: 10.1126/science.8079171.
4. Measuring enzymatic activities with nanopores / Y. Sheng, S. Zhang, L. Liu, H.-C. Wu // ChemBioChem. 2020. Vol. 21. Iss. 15. P. 2089–2097. DOI: 10.1002/cbic.202000079.
5. Nanopore-based measurement of the interaction of P450cam monooxygenase and putidaredoxin at the single-molecule level / H. Chen, Y. Lin, Y.-T. Long, S. D. Minteer, Y.-L. Ying // Faraday Discussions. 2022. Vol. 233. P. 295–302. DOI: 10.1039/d1fd00042j.
6. Single-molecule nanopore enzymology / K. Willems, V. van Meervelt, C. Wloka, G. Maglia // Philosophical transactions of the Royal Society B, Biological sciences. 2017. Vol. 372. Iss. 1726. Article no. 20160230. DOI: 10.1098/rstb.2016.0230.
7. Label-free and real-time detection of protein ubiquitination with a biological nanopore / C. Wloka, V. van Meervelt, D. V. Gelder, N. Danda, N. Jager, C. P. Williams, G. Maglia // ACS Nano. 2017. Vol. 11. Iss. 5. P. 4387–4394. DOI: 10.1021/acsnano.6b07760.
8. A nanopore approach for analysis of caspase-7 activity in cell lysates / B. Pham, S. J. Eron, M. E. Hill, Xin Li, M. A. Fahie, J. A. Hardy, Min Chen // Biophysical Journal. 2019. Vol. 117. Iss. 5. P. 844–855. DOI: 10.1016/j.bpj.2019.07.045.
9. A selective activity-based approach for analysis of enzymes with an OmpG nanopore / M. A. Fahie, B. Pham, F. Li, M. Chen // Methods in Molecular Biology. 2021. Vol. 2186. P. 115–133. DOI: 10.1007/978-1-0716-0806-7_9.
10. Рогожин В. В., Кутузова Г. Д., Угарова Н. Н. Ингибирование пероксидазы хрена N-этиламидом о-сульфобензоилуксусной кислоты // Биоорганическая химия. 2000. Т. 26. № 2. С. 156–160.
11. Davies P. F., Rennke H. G., Cotran, R. S. Influence of molecular charge upon the endocytosis and intracellular fate of peroxidase activity in cultured arterial endothelium // Journal of Cell Science. 1981. Vol. 49. Iss. 1. P. 69–86. DOI: 10.1242/jcs.49.1.69.
12. Sander S. A., Bray R. C., Smith A. T. pH-dependent properties of a mutant horseradish peroxidase isoenzyme C in which Arg38 has been replaced with lysine // European Journal of Biochemistry. 1994. Vol. 224. Iss. 3. P. 1029–1037. DOI: 10.1111/j.1432-1033.1994.01029.x.